Директор Инновационного Центра
«Биоаквапар — НТЦ аквакультуры» АГТУ
д.б.н, профессор Пономарев С.В.
Экспериментальные работы проводились на базе Инновационного центра «Биоаквапарк – НТЦ аквакультуры» ФГБОУ ВО «Астраханский государственный технический университет». Объектом исследования послужили сеголетки красной тиляпии (гибрид альбиносных самок мозамбикской и самцов нильской тиляпии). Для содержания тиляпии использовались аквариумы объемом 400 л с искусственной аэрацией и фильтрацией, а также подогревом.
Рисунок 1 – Аквариумы для красной тиляпии
При оценке влияния кормов на статус выращенных рыб применяли комплекс рыбоводно-биологических и физиолого-биохимических методов (Пономарев и др., 2002).
Для контрольного взвешивания и измерения делали случайную выборку в количестве 25 особей каждого варианта. Опытные корма изготавливали в лабораторных условиях с использованием кормовых компонентов отечественного производства (на все компоненты получены удостоверения качества и безопасности и сертификаты соответствия) методом влажного прессования при низком давлении. Компоненты растительного происхождения были подвергнуты предварительной микронизации для клейстеризации крахмала (процесс аналогичен экструзии), что повышает его перевариваемость и питательную ценность. После этого все компоненты взвешивали на электронных весах, а затем тщательно перемешивали с водой до однородной массы, после чего влажную смесь пропускали через мясорубку, высушивали в термостате при температуре 600С. Готовые комбикорма измельчали в дробилке и рассеивали в соответствии с необходимым размером крупки, который устанавливали в соответствии с массой выращиваемой рыбы. Рецептуры опытных кормов представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Состав продукционных комбикормов
№ | Компонент | Содержание | |||
Контроль | Вариант с 30% заменой | Вариант с 70% заменой | Вариант с 100% заменой | ||
1. | Шрот соевый | 15 | 15 | 15 | 15 |
2. | Шрот подсолн. | 7 | 7 | 7 | 7 |
3. | Пшеница | 15 | 15 | 15 | 15 |
4. | Рыбная мука | 45 | 31,5 | 13,5 | — |
5. | Белковый концентрат из личинок черной львинки | — | 13,5 | 31,5 | 45 |
6. | Рыбий жир | 7 | 7 | 7 | 7 |
7. | Пшенич. глютен | 5 | 5 | 5 | 5 |
8. | Мука мясная | 5 | 5 | 5 | 5 |
9. | Премикс ПМ-2 | 1 | 1 | 1 | 1 |
Содержание питательных веществ, % | |||||
10 | Сырой протеин | 48,36 | 46,32 | 43,61 | 41,57 |
11 | Сырой жир | 12,23 | 12,58 | 13,54 | 13,4 |
Содержание кислорода в воде устанавливали ежедневно три раза в сутки (для предупреждения нежелательных колебаний) с помощью термооксиметра «СyberScanDO 300». Значения рН определяли с помощью рН-метра марки «Hanna». Кроме этого 3 раза в сутки регистрировали температуру воды.
Схема измерений рыб проводилась по методике Правдина И.Ф. (1966).
Среднесуточную скорость роста старших возрастных групп вычисляли по формуле сложных процентов (Castell, Tiews, 1979):
А =[( mк /mо )1/t – 1] х 100 (%)
где mк и mо — масса рыбы в конце и в начале опыта;
t – продолжительность опыта, сут.
Абсолютный прирост вычисляли по формуле (Правдин, 1966):
Раб = mк – m0
где mк — конечная масса молоди, грамм;
m0 – начальная масса молоди, грамм.
Среднесуточный прирост вычисляли по формуле (Правдин, 1966):
Рср.сут. = (mк – m0)/t
где mк — конечная масса молоди, грамм;
m0 – начальная масса молоди, грамм.
t – продолжительность опыта, сут.
Для более точного определения скорости роста вычисляли коэффициент массонакопления (Резников и др., 1978; Купинский и др., 1986).
Км = ((Мк1/3 – Мо1/3)*3) / t
где Км – общий продукционный коэффициент скорости роста;
Мк и Мо – конечная и начальная масса рыбы, г;
t – время выращивания, сут.
Кормовые затраты вычисляли по формуле (Пономарев и др., 2002):
Кз= Ск/( mк – m0),
где Ск – количество корма, затраченное на выращивание рыб (затраты корма на единицу прироста).
Ск=R*mср.нач*t
где R – суточная норма корма, %; mср.нач – средняя начальная масса, г; t- период выращивания.
Выживаемость выражали в процентах от общего количества наблюдаемых рыб.
При определении норм кормления, а также размера крупки использовались рекомендации по кормлению, основанных на оптимальном качестве воды и температуры выращивания 270С. Корм задавался вручную 3-4 раза в сутки. Плотность посадки молоди устанавливали исходя из массы выращиваемой рыбы.
Все данные подвергали статистической обработке по Г.Ф. Лакину (1990) с применением панели программ статанализа Excel. При этом использовали элементы статистического анализа с определением средней, ошибки средней. Уровень различий оценивали с помощью критерия достоверности Стьюдента.
При оценке физиологического состояния рыб важное значение имеют гематологические показатели, изменения которых зависят от видовых и возрастных особенностей культивируемых рыб. Кроме того, биохимические показатели крови служат адекватным индикатором сбалансированности потребляемого корма.
Кровь отбирали прижизненно из хвостовой вены в пробирки Эппендорфа. Для гематологического анализа (концентрация гемоглобина, скорость оседания эритроцитов, лейкоцитарная формула) в качестве антикоагулянта использовали динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА).
Концентрацию гемоглобина в крови определяли фотометрически с помощью набора реактивов фирмы Агат-Мед (vanKampen, Zijlstra, 1961), СОЭ определяли по методу Панченкова. Мазки крови готовили с применением фиксатора-красителя по Май-Грюнвальду фирмы «Ольвекс-Диагностикум» (Козинец, 1998; Абрамов, 1985). Идентификацию лейкоцитов проводили с использованием микроскопа «ЛОМО» и иммерсионного объектива (100/1.25). На каждом мазке определяли 200 лейкоцитов с учетом стадий их цитогенеза по классификации Н.Т. Ивановой (1983).
Для биохимического анализа крови (общий белок, общие липиды, холестерин, глюкоза) образцы крови отбирали в пробирки без ЭДТА, оставляли коагулировать, затем центрифугировали при 3000 оборотах в минуту для отделения сыворотки.
Содержание сывороточного белка определяли на рефрактометре ИРФ-22 (Филиппович и др., 1975), уровень холестерина в крови определяли энзиматическим методом (Trinder, 1969; Fishbach, Dunning, 2004). Для определения общих сывороточных липидов использовали диагностический набор реактивов фирмы PLIVA – Lachema (Zollneretal., 1962; Knichtetal, 1972). Концентрацию глюкозы в сыворотке крови определяли энзиматическим колориметрическим методом без депротеинизации (реакция Триндера) (TrinderP., 1969). Для измерения оптической плотности полученных проб использовали спектрофотометр Unico 2100.
Результаты представлены в виде среднего значения показателя и его стандартной ошибки (M±m). Оценку достоверности проводили с использованием t-критерия Стьюдента.
Гематологические исследования проводились согласно «Методическим указаниям по проведению гематологического обследования рыб» (Утвержденные 2 февраля 1999 г., №13-4-2/1487).
Для гистологического анализа брали половые продукты самок, фиксировали в смеси Буэна, заливали в парафин и изготавливали срезы толщиной 7 мкм (Микодина и др., 2009). Полученные срезы окрашивали гематоксилин-эозином и фотографировали на микроскопе OlimpusBX 53.
В ходе эксперимента выживаемость в аквариумах с красной тиляпией была 100%. Лучшие и статистически достоверные показатели по результатам выращивания получены для группы опытных рыб, потреблявших корм с 30% заменой рыбной муки на белковый концентрат из личинок черной львинки (табл. 2).
Таблица 2 — Рыбоводно-биологические показатели выращивания красной тиляпии на опытных комбикормах
Показатели | Варианты опыта | |||
Контроль | Вариант с 30% заменой | Вариант с 70% заменой | Вариант с 100% заменой | |
Масса начальная, г | 109,27+5,26 | 109,27+5,26 | 109,27+5,26 | 109,27+5,26 |
Масса конечная, г | 138,07±2,2 | 157,9±2,59* | 150,31±3,06 | 139,11±1,02 |
Длина начальная, см | 15,03±1,09 | 15,03±1,09 | 15,03±1,09 | 15,03±1,09 |
Длина конечная, см | 17,1±0,74 | 18,6±1,01** | 18,2±1,02 | 17,9±1,03 |
Абсолютный прирост, г | 28,8 | 48,63 | 41,04 | 29,84 |
Среднесуточный прирост, г | 0,96 | 1,62 | 1,37 | 0,99 |
Среднесуточная
скорость роста, % |
0,77 | 1,22 | 1,06 | 0,80 |
Коэффициент
массонакопления, ед. |
0,038 | 0,061 | 0,052 | 0,039 |
Кормовой коэффициент | 1,4 | 1,1 | 1,1 | 1,3 |
Выживаемость, % | 100 | 100 | 100 | 100 |
Продолжительность
эксперимента, сут. |
30 | 30 | 30 | 30 |
Примечание: * различия достоверны при р≥0,001; ** -р≥0,05
За 30 суток абсолютный прирост во всех опытных группах превышал показатели контрольного варианта, причем в лучшем опытном варианте — в 1,68 раза. Весовой рост при кормлении тиляпии кормом с заменой на львинку шел интенсивнее, чем контрольном варианте, как и линейный.
Увеличение массы при потреблении тиляпией корма с кормовой добавкой также достоверно демонстрируют показатели среднесуточного прироста во всех опытных вариантах. В то время как в контрольной он был ниже лучшего варианта с 30%-ной заменой рыбной муки на 0,66 г. Кормовой коэффициент, который характеризует эффективность пищеварения и усвояемость корма, в опытных вариантахбыл выше – в варианте с 30%-ой заменой рыбной муки – на 0,3 ед. Таким образом, показатели роста свидетельствуют о положительном влиянии на молодь тиляпии замену рыбной муки на белковый концентрат из личинок черной львинки.
При изучении основных биохимических показателей выращенной молоди тиляпии достоверные различия в содержании протеина отмечены не были (табл. 3).
Таблица 3 – Биохимические показатели красной тиляпии (содержание, % в сухом веществе)
Показатели | Варианты опыта | |||
Контроль | Вариант с 30% заменой | Вариант с 70% заменой | Вариант с 100% заменой | |
Влага, % | 72,04 | 70,02 | 69,99 | 71,64 |
Белок, в сухом веществе % | 60,01±1,04 | 65,22±1,52 | 63,24±1,79 | 57,91±0,98 |
Липиды, в сухом веществе % | 20,3±0,76 | 19,31±0,39 | 21,41±1,21 | 22,97±0,97 |
Зола, в сухом веществе % | 19,02±0,36 | 18,74±0,84 | 19,16±0,21 | 18,72±0,78 |
При оценке биохимического состава тела тиляпий, участвующих в эксперименте достоверных отличий не выявлено. Однако, следует отметить повышение содержания уровня белка в контрольном и опытном варианте с 30% ной и 70% — ной заменой рыбной муки на белковый кнцентрат из личинок черной львинки. 100% замена рыбной муки также не сильно отразилась на биохимических показателях.
Объективно оценить состояние организма в предложенных условиях среды можно по физиолого-биохимическим показателям крови, которые выступают в качестве специфических индикаторов физиологических или патологических изменений организма. Рыбоводные показатели, как правило, коррелируют с физиологическим состоянием рыб, что подтверждается гематологическими показателями. Как видно из приведенной таблицы 4, прослеживается положительная динамика применения 30% — ной замены рыбной муки, что сказывается на повышении уровня гемоглобина, поддержания уровня глюкозы на уровне нормативных значений, снижению СОЭ, увеличению сывороточных белков и незначительному снижению холестерина в крови.
Таблица 4 — Физиолого-биохимические показатели крови тиляпии
Вариант | Гемоглобин, г/л | СОЭ, мм/ч | Общий белок, г/л | Холестерин, ммоль/л | Глюкоза, ммоль/л | |
Опытные варианты | Контроль | 81,05±3,09 | 4,4±0,09 | 23,01±0,63 | 3,41±0,03 | 3,2±0,03 |
Вариант с 30% заменой | 85,36±2,41 | 3,8±0,08 | 27,25±1,41 | 3,29±0,04 | 3,1±0,02 | |
Вариант с 70% заменой | 82,29±3,12 | 4,4±0,12 | 23,73±1,97 | 3,81±0,02 | 3,1±0,06 | |
Вариант с 100% заменой | 78,63±1,48 | 4,7±0,11 | 23,64±2,30 | 4,11±0,02 | 3,8±0,05 |
На сегодняшний день, наиболее исследовано влияние кормов с добавлением личинок мух при выращивании радужной форели, канального сома и синей тиляпии. Первоначальные исследования показали, что в случае с радужной форелью личинки черной львинки HermetiaIllucens могут заменить 25% рыбной муки или 38% рыбьего жира в кормах без каких-либо побочных эффектов. Таким образом, личинки мух являются идеальной заменой рыбной муки. Полученные в ходе проведенных нами исследований данные позволяют в первую очередь рекомендовать замену рыбной муки на 30% в продукционных кормах для тиляпии при их товарном выращивании, что повышает показатели роста, снижает кормовые затраты, а также поддерживает физиологическое состояние рыб на соответствующем нормам уровне. Также можно рекомендовать 70% -ную замену рыбной муки. 100%-ная замена рыбной муки за счет снижения белка и повышения жира в рецептуре не дает значительного повышения показателей роста по сравнению с остальными вариантами при индустриальном выращивании, однако не оказывает явного негативного влияния на рыбоводно-биологические и физиологические показатели.
На выставке состоялась презентация бренда Yumster («Ямстер»). ООО «Ямстер» - структурное подразделение ООО «Экобелок». Линейки…
С 21 по 23 сентября в Санкт-Петербурге в КВЦ «Экспофорум» проходила международная выставка Seafood Expo.…
ООО "Ямстер" приглашает посетить наш стенд на Международной выставке зооиндустрии «ПаркЗоо 2022», где мы презентуем…
В августе 2022 года совместно с популярным каналом «Садовый мир» был проведён опыт по использованию…
Исследования проводились в условиях вивария филиала СГЦ «Загорское ЭПХ» в 2019г на бройлерах кросса «Росс…